ادبیات نظری تحقیق تنش های محیطی گیاهان (docx) 28 صفحه

دسته بندی : تحقیق

نوع فایل : Word (.docx) ( قابل ویرایش و آماده پرینت )

تعداد صفحات: 28 صفحه

قسمتی از متن Word (.docx) :

تنشهاي محيطي: تنش يا استرس واژهاي است که اولين بار توسط دانشمندان علوم بيولوژيک در مورد موجودات زنده به کار برده شد. بعدها اين واژه از علم فيزيک برگرفته شده و آن را به عنوان هر عاملي که امکان بالقوه وارد آوردن صدمه به موجودات زنده را دارد تعريف نمودند (کافي، 1379). تنش، نتيجه روند غيرعادي فرايندهاي فيزيولوژيکي است که از تأثير يک يا ترکيبي از عوامل زيستي و محيطي حاصل ميشود. بنابراين تنش داراي توان آسيبرساني ميباشد که به صورت نتيجه يک متابوليسم غيرعادي روي داده و ممکن است به صورت آفت رشد، مرگ گياه و يا مرگ بخشي از گياه بروز کند (حکمت شعار، 1372). تنشهاي محيطي را معمولاً به دو دسته تقسيم کردهاند: تنشهاي ناشي از عوامل زنده - تنشهاي ناشي از عوامل غيرزنده تنشهاي ناشي از عوامل زنده شامل آفات و امراض است و تنشهاي عوامل غيرزنده به پنج گروه تقسيم شدهاند که از بين آنها خسارت وارد به گياهان زراعي در اثر تنشهاي کمبود آب، شوري و دما در سطح جهان گستردهتر بوده و به همين جهت بيشتر مورد مطالعه قرار گرفتهاند (کافي، 1372). - نقش آب در گياهان به طور کلي نقش آب در سلولهاي گياهي به شرح زير است: 1- حلال بوده و محيطي مناسب براي واکنشهاي شيميايي را فراهم ميکند. 2- محيطي مناسب براي انتقال موادمعدني ميباشد. 3- محيطي مناسب است که موجب تورم سلولهاي گياهي ميشود. آماس باعث بزرگ شدن سلول، ساختار گياه و شکلگيري آن ميگردد. 4- باعث آبگيري و خنثيسازي بار الکتريکي روي مولکولهاي کلوئيدي ميشود. درمورد آنزيمهاي آبگيري، موجب حفظ ساختمان آنزيم و تسهيل فعاليتهاي کاتاليزوري آن ميگردد. 5- ماده خام فتوسنتزي، فرآيندهاي هيدرولتيکي و ساير واکنشهاي گياهي را تشکيل ميدهد.(1/٪) 6- تبخيرآب و تعرق موجب خنک شدن سطوح گياه ميگردند (99٪آب جذب شده توسط گياه صرف تعرق ميشود). 7- آب جزء تشکيل دهنده اصلي پرتوپلاسم است و 89-85 درصد وزن تر اغلب بافتها را تشکيل ميدهد(عليزاده، 1384). - تنش خشکي به طور کلي در بين تمام تنشها، تنش خشکي يکي از مهمترين و شايعترين عوامل محدودکننده رشد گياهان در مناطق خشک و نيهخشک به شمار ميآيد (Turhan & Baser., 2004). خشکي يکي از مهمترين فاکتورهاي محدودکننده توليد است که در بسياري از نقاط دنيا مسئله تهديد کننده و رو به رشدي است (Passioura., 2007). بسياري از گياهان حداقل يک بار در سيکل زنگي خود با خشکي مواجه ميگردند و اين زماني است که بذر آنها رسيده و خشک ميشود (آرمندپيشه و همکاران، 1388). خشکي يک عامل مهم براي کاهش محصول در سرتاسر جهان است که ميانگين عملکرد را تا 50 درصد و بيشتر کاهش ميدهد (Efeoglu et al., 2009) و تقريباٌ توليد 25 درصد زمينهاي جهان را محدود ميکند (آرمند پيشه و همکاران، 1388). خشکي تنها کمبود آب در محيط رشد گياه نميباشد بلکه در اثر تعدادي از عوامل محيطي ديگر مانند درجه حرارت زياد، کمبود رطوبت نسبي هوا، سرعت شديد جريان هوا و روزهاي آفتابي به وجود آمده و تحت تأثير اين عوامل تشديد ميگردد (کافي و مهدوي دامغاني، 1379). لذا به طور کلي آب يکي از مهمترين عوامل موثر در عملکرد است و تنش آب در گياهان علوفهاي سبب کاهش سرعت رشد، کاهش سطح برگ و نهايتاً کاهش توليد ميشود (راهنما و همکاران 1387). استرس ناشي از خشکي زماني روي ميدهد که آب موجود در خاک کاهش يابد و شرايط جوي به دفع آب از طريق تعرق ـ تبخير، کمک مينمايد. همچنين استرس ممکن است به مدت يک روز يا در يک دوره طولاني اتفاق بيفتد و در صورت ادامه خشکي گياه ممکن است در اثر خشکي از بين رود، مگر اينکه داراي مکانيزمهاي مقاومت باشد تا از طريق آنها دفع آب در عدهاي از بافتها و اندامها متوقف و يا کاهش حاصل کند يا اينکه آنها قادر باشند سرعت جذب و انتقال آب را افزايش دهند (حکمت شعار، 1372). از نقطه نظر کشاورزي، خشکي عبارت است از ناکافي بودن آب قابل دسترس، شامل بارش نزولات، ظرفيت ذخيره رطوبت خاک، مقدار و پراکندگي آن در طي دوره ي رشد گياهان زراعي است که باعث محدود شدن پتانسيل ژنتيکي عملکرد گياه زراعي ميشود (vinocur and Altman., 2005; Gubis et al., 2007). اين محدوديت به همراه ساير تنشهاي غيرزنده از جمله شوري، سرما، گرما، و تنشهاي زنده، پتانسيل ژنتيكي عملكرد گياهان زراعي را به مقدار قابل توجهي كاهش ميدهند (Parrish et al., 2006; Ping et al., 2006; Verslues et al., 2006; Martinez et al.,). - اثرات خشکي بر رشد و عملکرد اولين و مهمترين تأثير خشکي آسيب زدن به جوانه و استقرار ضعيف آن است. رشد عبارت است از تقسيم سلول، طويل شدن سلول و تمايز، و درگير کردن رويدادهاي ژنتيکي، فيزيولوژيکي و مورفولوژيکي و ترکيب اثرات متقابل پيچيده آنها. کيفيت و کميت رشد گياه وابسته به فرآيندهايي است که بوسيله کمبود آب متأثر هستند. رشد سلول يک فرآيند فيزيولوژيکي حساس به خشکي است که دليل آن کاهش فشار تورگر ميباشد. در کمبود شديد آب، طويل شدن سلول بيشتر گياهان بوسيله قطع جريان آب از آوند چوب به سلولهاي در حال رشد اطراف متوقف ميشود (Farooq et al., 2009). تخريب تقسيم ميتوز، منجر به کاهش طويل شدن سلول و در نهايت ارتفاع، سطح برگ و رشد محصول تحت تنش خشکي ميشود (Kaya et al., 2006., Hussain et al., 2008). در مورد تنش آب شدت، مدت و زمان تنش به علاوه پاسخهاي گياهان بعداز بر طرف شدن تنش و اثر متقابل بين تنش و ديگر فاکتورها به شدت مهم هستند (Plaut., 2003). - اثرات خشکي بر روابط آب مقاومت روزنهاي، نسبت تعرق محتواي نسبي آب برگ، درجه حرارت برگ و درجه حرارت کانوپي خصوصيات مهمي هستند که روي روابط آب تأثير ميگذارند. اگرچه اجزاي روابط آب گياه از کاهش يافتن آب قابل دسترس متأثر هستند، در حقيقت باز و بسته بودن روزنه تأثير بيشتري دارد. به علاوه تغيير در درجه حرارت برگ ميتواند فاکتور مهمي در کنترل وضعيت آب برگ در تنش خشکي باشد. گونه هاي متحمل به خشکي WUE را بوسيله کاهش تلفات آب حفظ ميکنند (Farooq et al., 2009). - اثرات خشکي بر روابط غذايي نياز هاي آب و عناصر غذايي به هم وابسته هستند، کاربرد کود احتمالا کارآيي گياهان را در بهره برداري از آب قابل دسترس افزايش ميدهد. اين نشان دهنده اثر متقابل معني دار بين کمبود رطوبت خاک و گرفتن عناصر غذايي ميباشد. مطالعات پاسخ مثبت محصول به بهبود حاصلخيزي خاک در شرايط خشک و نيمه خشک نشان داد. واضح است که عملکرد محصول ميتواند اساسا بوسيله بالا بردن کارآيي عناصر غذايي گياه در کمبود عرضه آب بهبود پيدا کند (Farooq et al., 2009). - اثرات خشکي بر فتوسنتز كاهش تدريجي مقدار آب سلولي منجر به كاهش ميزان فتوسنتز و در نهايت سبب توقف آن ميشود (Lawlor and Cornic., 2002). يكي از عوامل مهم در كاهش فتوسنتز بسته شدن روزنهها در شرايط كسر آب مي باشد، كه نتيجه آن كاهش هدايت روزن اي و در نهايت كاهش ميزان فتوسنتز ميباشد. محدوديت روزن اي سبب كاهش ميزان فتوسنتز و غلظت CO2 در فضاي بين سلولي برگ ميشود، كه به نوبه خود سبب جلوگيري از متابوليسم م شود (Lawlor., 2002). هنگاميكه مقدار آب سلول از 100 درصد به 75 درصد كاهش مي يابد، هدايت روزنهاي كاهش مي يابد و در نتيجه فتوسنتز كاهش مييابد. ب طور كلي ميزان فتوسنتزبالقوه (حداكثر ميزان فتوسنتز تحت شرايط اشباع CO2 و نور و برگهاي كاملا اشباع از آب) با مقدار آب سلول دو نوع رابطه كلي دارد كه نوع 1 و نوع 2 ناميده مي شوند. نوع 1 دو مرحله اصلي دارد. هنگاميكه مقدار آب نسبي سلول از 100 درصد تقريباً به 75 درصد مي رسد، فتوسنتز بالقوه تحت تأثير قرار نميگيرد، اما كاهش هدايت روزنهاي منجر به كاهش فتوسنتز، پايين رفتن غلظت CO2 در داخل برگ و در كلروپلاست ميشود. اگر مقدار آب نسبي به پايين تر از 75 درصد برسد، بازدارندگي متابوليكي براي فتوسنتز بالقوه و سپس توقف فتوسنتز رخ ميدهد. پيشنهاد شده كه اين مرحله تنش واقعي است، كه كاهش فتوسنتز بالقوه بوسيله كاهش سنتز ATP و متعاقب آن کاهش سنتز ريبولوز بي فسفات (RuBP) بوجود ميآيد. عکسالعمل نوع 2 زماني رخ ميدهد که فتوسنتز بالقوه تدريجاً از مقدار آب نسبي 100 درصد تا 75 درصد كاهش مييابد و ميزان فتوسنتز با بالا بردن ميزان CO2 كمتر به مقدار ا وليه (حالت بدون تنش) باز ميگردد. در اين مرحله کاهش هدايت روزنهاي منجر به کاهش CO2 داخل برگ و داخل کلروپلاست ميشود و احتمالا به نقطه جبراني نميرسد، در اين مرحله هدايت روزن اي به تدريج کم اهميتتر ميشود و محدوديتهاي متابوليكي با كاهش مقدار آب نسبي پر اهميتتر ميشوند. در تنش خشكي متوسط، محتواي آب برگها كاهش مييابد ولي در ظرفيت فتوسنتزي گياه تغييري مشاهده نميشود. در تنش خشكي شديد سلولها تا حد زيادي آب خود را ازدست ميدهند و تا زماني اين امر ادامه پيدا ميكند كه فقط آب پيوندي باقي ميماند و در نتيجه خسارات شديدي به سلولها وارد شده و رشد و فتوسنتز گياه به شدت محدود ميگردد. گياهان مقاوم به خشکي وظايف روزنهاي خود را به نحوي تنظيم مينمايند که حتي در شرايط تنش نيز قادر به تثبيت مقداري دي اکسيد کربن نيز هستند و در نتيجه راندمان فتوسنتزي خود را ميتوانند در حد بالا حفظ نمايند. وجود مقدار کافي آب براي حفظ فتوسنتز، عملکرد و رشد ضروري است (جوادي و بهرام نژاد، 1389). مقاومت انتشار روزنه به ورود Co2 احتمالا فاکتور اصلي محدود کننده فتوسنتز در خشکي است. مطمئنا در تنش خشکي ملايم يا متوسط بسته شدن روزنه (به علت کاهش غلظت Co2داخل برگ) دليل مهم براي کاهش نسبت فتوسنتز برگ است. تنش خشکي شديد همچنين از فتوسنتز گياه به علت تغيير در مقدار کلروفيل، بوسيله تأثير روي ترکيبات کلروفيل بوسيله خسارت به دستگاه فتوسنتز جلوگيري ميکند (Mafakheri., 2010). - مکانيسمهاي فيزيولوژيکي تحمل به خشکي اولين نتايج فيزيولوژيكي تنش آبي ملايم شامل كاهش توسعه سلولي، سنتز ديواره سلولي، سنتز پروتئين، بسته شدن روزنهاي و فتوسنتز است. (جوادي و بهرام نژاد، 1389). تنظيم اسمزي، حفظ تراوش، آنتي اکسيداسيون و تنظيم سيستم دفاعي در تحمل به خشکي بيشتر اهميت دارند. برخي از اين مکانيسمها در زير اشاره شده است (Farooq et al., 2009). - حفظ آب سلول و بافت تنظيم اسمزي به سلول اجازه ميدهد تا پتانسيل اسمزي را کاهش دهد و در نتيجه، شيب نفوذ آب و حفظ تورم افزايش مييابد. بهبود وضعيت آب بافت ميتواند از طريق تنظيم اسمزي و يا تغيير در قابليت ارتجاع ديواره سلولي نائل شود. اين براي فعاليت فيزيولوژيکي در دورههاي توسعه يافته خشکي ضروري است (Farooq et al., 2009). در ميان مکانيسمهاي مختلف تنظيم اسمزي، آبسزيکاسيد و مکش آب ميتواند تحمل دوباره به خشکي را بوسيله حفظ پتانسيل آب بالاي بافت برقرار کنند (Turner et al., 2001). با تجمع املاح، پتانسيل اسمزي در سلول کاهش مييابد و با جذب آب به داخل سلول به حفظ تورگر کمک ميکند. تنظيم اسمزي به حفظ بالانس آب سلول با تجمع فعال املاح در سيتوپلاسم کمک ميکند، بدين وسيله اثرات مضر خشکي به حداقل ميرسد. تنظيم اسمزي ويژگي مهمي در به تاخير انداختن خسارت از دست دادن آب در محيطهايي که کمبود آب دارند، بوسيله حفظ دائم تورم سلول و فرآيندهاي فيزيولوژيکي ميباشد (Farooq et al., 2009). تنظيم اسمزي همچنين تسهيل ميکند جابهجايي بهتر قبل از گلدهي کربوهيدراتهاي جدا شده طي پر شدن دانه را در حاليکه حفظ تورگر بالا به نسبت فتوسنتز بيشتر و رشد منجر ميشود (Subbarao et al., 2000). - نقش آنزيمهاي آنتي اکسيدان قرار گرفتن در معرض تنشهاي محيطي (شامل خشکي، سرما، شوري و ...) منجر به توليد راديکال آزاد شامل اکسيژن واحد (O2)، پرهيدروکسيل راديکال (H2O)، هيدروکسيل راديکال (O2-2)، پراکسيد هيدروژن (H2O2) و آلوکسي راديکال (RO) ميشود. راديکالهاي آزاد ميتوانند با پروتئينها، چربيها و DNA، واکنش نشان دهند و منجر به خسارت اکسيداتيو و آسيب زدن به فعاليت نرمال سلولها شوند. سيستم دفاع آنتي اکسيداني در سلول گياه شامل اجزاء (سازندههاي) آنزيمي و غيرآنزيمي ميباشد. اجزاء آنزيمي عبارتنداز سوپر اکسيد ديسماتاز، کاتالاز، پراکسيداز، آسکوربات پراکسيداز و گلوتاتيون ريداکتاز. به محض قرار گرفتن در معرض تنشهاي غير زنده، سلولهاي متحمل، سيستم آنتياکسيدان آنزيميشان را فعال ميکنند که پس از شروع، راديکالهاي آزاد فروکش ميکنند و سلول حفاظت ميشود (Farooq et al., 2009). - خصوصيات مطلوب يک بوته گياهي براي تحمل خشکي برخي گياهان از جمله سورگوم داراي ويژگيهاي مطلوب براي تحمل خشکي هستند از جمله تعداد مناسب پنجه، ريشه، خوشه، ريشکدار بودن و غيره که به اختصار پرداخته ميشود. - تعداد پنجه غلاتي که پنجهزني بالقوه آنها 2 تا 3 عدد محدود ميشود در گروه متحملترين واريتهها به ويژه در منطقه خشک هستند. گياهان زراعي که پنجهزني محدود دارند ميتوانند استفاده بيهوده از آب را در شرايط خشکي کاهش دهند (Blum., 1972). در ضمن گياهان تک ساقه به دليل عدم پوشاندن سطح خاک مفيد نميباشند. - ريشه در مورد سيستمهاي ريشهاي در گندم بهتر است ريشههاي جنيني بيشتر باشد تا در مراحل اوليه رشد جذب آب بهتر صورت گيرد (Passioura., 2007). همچنين همزيستي ريشههاي سورگوم با برخي از گونههاي قارچ مايکوريزا از طريق افزايش قدرت جذب آب توسط ريشه منجر به افزايش مقاوت آن به خشکي ميشود (Cho et al., 2006). - خوشه خوشه فقط ساختماني براي حمل اندامهاي زايشي نيست بلکه نقش قابل توجهي نيز در فتوسنتز گياه دارد که در شرايط تنش اهميت زيادي دارد (Blum., 1985). با مرور تعدادي از تحقيقات صورت گرفته در اين زمينه نشان داده شده است که توانايي بهتر خوشهها در مقايسه با برگها از نظر تامين مواد پرورده براي رشد دانهها در شرايط خشکي تا حدودي به دليل قابليت دسترسي بيشتر دانهها به خوشه است. در شرايط تنش پتانسيل آب خوشه بالاتر و تنظيم اسمزي در آن به طور موثري انجام ميشود. - برگ بهتر است برگهاي پاييني به صورت افقي باشند و به طرف بالا برگها زاويه تند داشته باشند. همبستگي منفي بسيار معنيداري ميان سطح برگ اوليه و تبخير و تعرق نسبي وجود دارد. سطح برگ اوليه زياد سبب افزايش تلفات آب در ابتداي تنش خشکي ميشود. بذر هاي واريتههايي که داراي غلاف برگ طولانيتري هستند ميتوانند در عمق بيشتري کشت شوند و از ذخيره آب در عمق بيشتر استفاده کنند. به طر کلي سورگوم به دليل دارا بودن خصوصياتي نظير قابليت تنظيم اسمزي بالا، سيستم ريشهاي عميق و گسترده پوشش لايه مومي روي ساقه و برگ افزايش راندمان مصرف آب از طريق تنظيم حرکت برگها، مقاومت زياد به آب کشيدگي، تنظيم روزنهاي و توانايي انتقال مجدد مواد فتوسنتزي ذخيره شده در برگها و ساقه براي پر کردن دانهها در شرايط تنش خشکي ميتواند به رشد و نمو خود ادامه دهد و عملکرد قابل قبولي توليد نمايد (کوچکي 1372). - راهبرد ها در شرايط تنش: اين مشکل در مناطقي با آب و هوايي مديترانهاي همانند ايران از اهميت ويژهاي برخوردار بوده و لزوم استفاده صحيح از منابع آبي را امري اجتناب ناپذير ساخته است. اثرات تنش خشکي ميتواند بوسيله توليد بيشتر ژنوتيپهاي گياهي مناسب به علاوه تنظيم شيوههاي کشاورزي (زمان کاشت، تراکم گياه و مديريت خاک) مديريت شود. از استراتژيهاي مهم مديريت تنش ميتوان اصلاح ژنتيک گياهان، تحريک تحمل به خشکي گياه با پيش تيمار کردن و کاربرد هورمون و همچنين استفاده از موادي که بتوان آب را براي مدت بيشتري در خاک ذخيره کرد نام برد (Farooq et al., 2009). چنانچه بتوان با مديريت صحيح کمآبياري و کاشت گياهان متحمل به خشکي در ميزان آب آبياري صرفهجويي کرد، ميتوان با ميزان آب موجود سطح زير کشت را افزايش و به افزايش توليد کمک کرد (راهنما و همکاران، 1387). منابع احمدي، ع.، د.، آ، بيکر. 1379 . عوامل روزنهاي و غير روزنهاي محدود کننده فتوسنتز در گندم در شرايط تنش خشکي. مجله علوم کشاورزي ايران 31(4). 825-813 باقريکمارعليا، م. 1375. بررسي شاخصهاي فيزيولوژيک مؤثر در ارزيابي ارقام گندم مقاوم به خشکي. پايان نامه کارشناسي ارشد دانشگاه آزاد اسلامي. بخشي خانيکي، غ. ر. فتاحي، ف. يزدچي، س.1386. بررسي اثر تنش خشکي برروي برخي از صفات مورفولوژيک ده رقم گياه جو در شرايط آب و هوايي اسکو. مجله پژوهش و سازندگي. شماره 74. ص 114- پورکاظم، ا.، 1387. اثر روش هاي مختلف کاشت رديفي بر سورگوم علوفه اي. نشريه علمي، اقتصادي، کشاورزي دامدار. 17 (204): 40 – 47 تايز، لينکلن و زايگر.1379فيزيولوژي گياهي جلد دوم. ترجمه دکتر محمد کافي و همکاران. مشهد. انتشارات جهاد -دانشگاهي مشهد 379 ص. جوادي، ت.، بهرام نژاد، ب.، 1389. محتواي نسبي آب و تبادلات گازي سه ژنوتيپ وحشي گلابي در شرايط تنش آبي. نشريه علوم باغباني (علوم و صنايع کشاورزي). 24 (2): 223- 233. حاج بابائي، م.، عزيزي، ف و ک. زرگري 1390 تأثير تنش خشکي بر عملکرد علوفه تر و برخي صفات زراعي هيبريدهاي مختلف ذرت. فصلنامه علمي و پژوهشي گياه و زيست بوم.25 (7). 57-45 حجازي، ا، 1358، گياهان نواحي گرمسيري و نيمه گرمسيري، انتشارات دانشکده عمران روستائي دانشگاه ابو ريحان بيروني، 478 صفحه. حکمت شعار، ح .1372. فيزيولوژي گياهي در شرايط دشوار. ترجمه . چاپ اول. انتشارات تبريز150 ص حيدري، م 1386 واکنش گياهان به تنشهاي محيطي. انتشارات ارس رايانه. چاپ اول.96 ص خدابنده، ن، 1362، زراعت غلات،انتشارات مرکز نشر سپهر، 401 صفحه. خزاعي.، ح. ع. محمدآبادي، و ا. برزوئي.1384.بررسي صفات مورفولوژيک و فيزيولوژيک انواع ارزن در رژيمهاي مختلف آبياري. مجله پژوهشهاي زراعي ايران.3(1): 45-34 خزاعي، ح. ر. 1381. اثر تنش خشکي بر خصوصيات فيزيولوژيکي ارقام مقاوم و حساس گندم و معرفي مناسب ترين شاخصهاي مقاومت به خشکي. رساله دکتري زراعت، دانشکده کشاورزي دانشگاه فردوسي مشهد. 225 ص. خواجه پور ، م، ر، 1380، توليد غلات، چاپخانه دانشگاه صنعتي اصفهان،110 صفحه. راشد محصل، م، ح و م، حسيني و م، عبدي و ع ملافيلابي، 1367، زراعت غلات (ترجمه)، انتشارات جهاد دانشگاهي مشهد،406 صفحه. راهنما، ع.، آبسالان ش.، مکوندي، م.ا.، 1387. اثر کم آبياري بر عملکرد و اجزاي عملکرد سه رقم رحماني، م.، حبيبي، م. شيراني راد، ا و ج. دانشيان 1388. اثر کاربرد غلظتهاي مختلف پليمر سوپرجاذب بر عملکرد و فعاليت آنزيمهاي آنتي اکسيدان در گياه دارويي خردل در شرايط تنش خشکي. مجله علمي پژوهشي تنشهاي محيطي در علوم گياهي . 1 (1 ). 23-28 رستگاري، م.ع. 1378. ديمکاري، انتشارات برهمند، چاپ سوم ؛376ص. زهتابيان، غ.ر.، زارع چاهوکي، م.ع.، 1389. مقايسه عملکرد و ميزان پروتئين در پنج رقم سورگوم علوفه اي در شرايط آب و هوايي خراسان جنوبي. نشريه زراعت (پژوهش و سازندگي). 88: 20 – 25 سپاسخواه، ع.، 1375، کم آبياري به روش آبياري جويچه اي يک در ميان. مجموعه مقالات هشتمين سمينار کميته آبياري و زهکشي ايران: 306-291 سورگوم علوفه اي. مجله پژوهش در علوم زراعي. 1( 2): 11 - 23. شفازاده ،م.، ا.اميني ،و م.ر.قنادها .1383 .بررسي به تحمل به خشکي آخر فصل در ژنوتيپ هاي اميد بخش گندم زمستانه و بينابين با استفاده از شاخص هاي حساسيت و تحمل به تنش.مجله نهال و بذر.جلد 2.صفحه 57. طالب نژاد، ع، 1373، بررسي و مقايسه عملکرد و ميزان پروتئين ارقام و هيبريدهاي جديد سورگوم علوفه اي، مرکز تحقيقات کشاورزي استان مرکزي عادلي، س. 1374. رابطهي شاخصهاي رشد و ميزان قندهاي ساقه در مراحل مختلف نمو در ارقام و لاينهاي سورگوم شيرين. پايان نامه کارشناسي ارشد علوم گياهي از دانشگاه اصفهان. عليزاده، 1384 رابطه آب و خاک و گياه. ترجمه. انتشارات جهاد دانشگاهي مشهد 470 ص فاطمي، ر.، کهراريان، ب. قنبري، ا و م. ولي زاده.1385 . بررسي اثرات رژيمهاي مختلف آبياري و نياز آبي بر عملکرد و -اجزاء عملکرد ذرت هيبريد سينگل کراس 334 . مجله علوم کشاورزي.12 (1). 140-133 فدايي، ع1386 بررسي اثر تنش خشکي بر برخي خصوصيات رشدي و عملکرد سه رقم ذرت دانهاي در منطقه کرمان. پايان نامه کارشناسي ارشد زراعت. دانشکده کشاورزي دانشگاه شهيد باهنر کرمان. فومن، ع.، 1389. ارزيابي صفات مورفولوژيک و عملکرد کمي و کيفي ارقام مختلف سورگوم علوفه اي. کيخاني، ف، گنجي خرم دل، ن.، فرازنجو، م.، کيخا، غ.، ثقفي، ک.، کيخا، م.، 1389. بررسي اثر کم آبياري بر عملکرد و کارائي مصرف آب محصول سورگوم علوفه اي در منطقه سيستان. مجله پژوهش آب در کشاورزي. 24 (1): 41 – 49. فومن، ع.، قنادها، م.ر.، حسين زاده، ع.، شکيب، ع.م، 1385. بررسي صفات کمي و کيفي ارقام جديد سورگوم علوفهاي در چين هاي مختلف. نهال و بذر. 22 (2): 215 – 224. فومن، ع.، مختارزاده، ع.ا.، بهشتي، ع.، شيري، م.ر.، راهنما، ع.، نادعلي، ف.، نورمحمدي، س.، حسن زاده مقدم، ه.، 1387. معرفي رقم. پگاه، رقم جديد سورگوم علوفه اي. نهال و بذر. 24 (2): 367 – 371. قربانلي، م. فيزيولوژي گياهي1366 مرکز نشر دانشگاهي تهران336 ص. کافي، م. و ع. ا. مهدوي دامغاني1379 مکانيزمهاي مقاومت گياهان به تنشهاي محيطي. ترجمه. انتشارات دانشگاه فردوسي مشهد467 ص. کافي، م. و مهدوي دامغاني، ع.، 1379. مکانيزم هاي مقاومت گياهان به تنشهاي محيطي. انتشارات دانشگاه فردوسي مشهد، 254. کدخدايي، ا و ب، احسان زاده، 1389. ارتباط عملکرد دانه ميزان روغن بزرک با ميزان کلروفيل، پرولين و کربوهيدراتهاي محلول برگ تحت رژيم مختلف آبياري. مجله علوم گياهان زراعي 42(1) : 125-131 کريمي.، م، م. اصفهاني، م. ح. بيگل.ئي، و ع. قاسمي.1388. تأثير تيمارهاي آبياري بر صفات مورفولوژيک و شاخصهاي رشد ذرت علوفهاي در شرايط آب و هوايي رشت. مجله الکترونيک توليد گياهان زراعي. 2 (2). 110-91 کريمي، ه. 1384. زراعت و اصلاح گياهان علوفه اي. انتشارات دانشگاه تهران کريمي، ه، 1367، زراعت و اصلاح گياهان علوفه اي، انتشارات دانشگاه تهران، 414 صفحه. کلاميان، س.، س. ع. م. مدرس ثانوي و ع. سپهري.1384. تأثير تنش کمبود آب در مراحل رشد رويشي و زايشي در - هيبريدهاي پربرگ و تجاري ذرت. مجله پژوهش آب، خاک و گياه در کشاورزي.5 (35). 53-38 کليدري، ع.، موسوي نيک، س.م.، بهشتي، ع.، صفايي، م.، 1386. ارزيابي سرعت رشد محصول، صفات مورفولوژيک و عملکرد علوفه در ارقام مختلف سورگوم علوفه اي در منطقه مشهد. پژوهشنامه علوم کشاورزي. 1 (8): 37 – 52 کوچکي، ع. 1372، زراعت در مناطق خشک. انتشارات جهد دانشگاهي مشهد کوچکي،ع و ک، سرمد نيا 1379 فيزيولوژي گياهان زراعي. ترجمه انتشارات جهاد دانشگاهي مشهد 400ص کوچکي، ع. و ع. ح. سرمدنيا. 1379. فيزيولوژي گياهان زراعي. ترجمه. انتشارات جهاد دانشگاهي مشهد کوچکي، ع، 1364، زراعت در مناطق خشک، انتشارات جهاد دانشگاهي مشهد، 202 صفحه. کوچکي، ع، و ح، خياباني و غ، سرمدنيا، 1366، توليد محصولات زراعي، انتشارات دانشگاه فردوسي مشهد،شماره 97،638 صفحه. گالشي، س، 1371، مقايسه عملکرد چهار رقم و توده سورگوم علوفه اي در گنبد، مجله علمي و پژوهشي دانشگاه علوم کشاورزي گرگان جلد 2 شماره 2 صفحه 76-69. المدرس، ع.، ر. طاهري و و. صفوي. 1387. سورگوم (گياه شناسي، زراعت و بيوتکنولوژي). انتشارات جهاد دانشگاهي واحد اصفهان.264 صفحهمجله علوم گياهان زراعي. 41 (4): 833 – 840 مظاهري، د.، م. آقا عليخاني. 1377. بوم شناسي گياهان گرمسيري. تاليف نورمن، ام، جي. سي، پيرسون و پي، سيرل. انتشارات دانشگاه تهران. مقدم، ن.، م . آروين، غ. خواجويي نژاد و ع. مقصودي. 1390. اثر اسيد ساليسيليک بر رشد و عملکرد علوفه و دانه ذرت در شرايط تنش خشکي در مزرعه. مجله به زراعي نهال و بذر.2 (27): 55-41 موحدي دهنوي، م.، ع. مدرس ثانوي، ع. سروش زاده، و م. جلالي، 1383. تغييرات ميزان پرولين، قندهاي محلول کل، -کلروفيل ) SPAD ( و فلورسانس کلروفيل در ارقام گلرنگ پائيزه تحت تنش خشکي و محلول پاشي روي و منگنز. مجله بيابان.9(1):109-93 موسوي.، ع. م. ميرهادي، ع. سيادت، ق. نورمحمدي، و ف. درويش1388. تأثير تنش کمآبي و کود نيتروژن بر عملکرد و راندمان مصرف آب ارزن علوفهاي. مجله دانش نوين کشاورزي. 15(5). 114-101 ناخدا.، ب، ا. هاشمي دزفولي، و ن. صدر بررسي.1379. تأثير تنش کمآبي بر عملکرد علوفه و خصوصيات کيفي ارزن علوفهاي نوتريفيد. مجله علوم کشاورزي ايران.31 (4). 712-701 نباتي، ج. و ر. مقدم. 1389. اثر فواصل آبياري بر عملکرد و خصوصيات مورفولوژيکي ارزن، سورگوم و ذرت علوفهاي.41 (1). 179-186 نور محمدي، ق و ع، سيادت و ع، کاشاني،1377، زراعت غلات (ترجمه)، انشارات دانشگاه شهيد چمران، 446صفحه نورمحمدي، ق.، سيادت، س.ع.، کاشاني، ع.،1386. زراعت غلات.انتشارات دانشگاه شهيد چمران اهواز. جلد اول خدابنده، ن. 1369. غلات. انتشارات دانشگاه تهران، تهران، 506 صفحه. چاپ هفتم. 425- 434. ولد آبادي، س.ع.، مظاهري، د.، نورمحمدي، ق.، هاشمي دزفولي، س.ا.، 1379. بررسي اثر تنش خشکي بر خواص کمي و کيفي و شاخص هاي رشد ذرت، سورگوم و ارزن. مجله علوم زراعي ايران. 2 (1): 39 – 47. هاپکينز، و. ج.1383 مقدمهاي بر فيزيولوژي گياهي. ترجمه. جلد اول. انتشارات دانشگاه تهران 653 ص0804-02-RS Abdul Jaleel C., Riadh K., Gopi R., Manivannan P., Ines J., Al-Juburi H. J.,Chang-Xing Z., Hong-Bo S. and Panneerselvam R. 2009. Antioxidand Acevado, E., T. C. Hesiao and D. W. Handerson. 1971. Immediate and subsequent growth responses of mais leaves to chnges in water statues. Plant Physiol. 48: 631-639. Agarawal S., Sairam R. K., Srivasta G. C. and Meena R. C. 2005. Changes in antioxidant enzymes activity and oxidative stress by abscisic acid and salicylic acid in wheat genotypes. Biol. Plant, 49(4): 541-550. Agboma, P., T. Sinclair, K. Jokinen, P. Peltonen-Sainio and E. Pehu. 1997. An evaluation of the effect of exogenous glycine betaine on the growth and yield of soybean. Field Crops Research, 54: 51–64. Agboma, P.C., Sinclair, T.R., Jokinen, K., Peltonen-Sainio, P., Pehu, E., 1997. An evaluation of the effect of exogenous glycine betaine on the growth and yield of soybean: timing of application, watering regimes and cultivars. Field Crops Res. 54, 51–6 Agenbay, G. A. 1995. Physiological response of spring wheat cultivare to post-anthesis water stress and intensity. Sourth African. J. Plant Sci. 12: 27-31. Aldesuquy, HS., Mankarios AT., Awad HA (1998). Effect of some antitranspirants on growth, metabolism and productivity of salinetreated wheat plants. Induction of stomatal closure, inhibition of transpiration and improvement of leaf turgidity. Acta Bot Hungarica 41:1–10. Alia, Saradhi, P.P., Mohanty, P., 1997. Involvement of proline in protecting thylakoid membranes against free radical induced photodamage. J. Photochem. Photobiol. 38, 253–257. Allard, F., M. Houde, M. Krol, A. Ivanov, N. P. A. Huner, and F. Sarhan. 1998. Betaine improves freezing tolerance in wheat. Plant Cell Physiology, 39: 1194-1202 Almodares, A., and M.R. Hadi. 2009. Production of bioethanol from sweet sorghum: A review. African Journal of Agricultural Research 4:772-780. Almodares, A., and M.R. Hadi. 2009. Production of bioethanol from sweet sorghum: A review. African Journal of Agricultural Research 4:772-780. Almodares, A., and S.M. Mostafafi Darany. 2006. Effects of planting date and time of nitrogen application on yield and sugar content of sweet sorghum. Journal of Environmental Biology 27:601-605. Almodares, A., M.R. Hadi, M. Ranjbar, and R. Taheri. 2007. The effects of nitrogen treatments, cultivars and harvest stages on stalk yield and sugar content in sweet sorghum. Asian J. Plant Sci 6:423-426. Almodares, A., R. Taheri, and S. Adeli. 2008b. Stalk yield and carbohydrate composition of sweet sorghum [Sorghum bicolor (L.) Moench] cultivars and lines at different growth stages. J. Malesian Appl. Biol 37:31-36. Antolin, M., J. Yoller, and M. Sanchez- Diaz. (1995). "Effects of temporary drought on nitrate-fed and nitrogen-fixing alfalfa plants." Journal of Plant Science 107(2): 159-165. Baghizadeh A., Hajmohammadrezaei.M.(2011). Effect of drought stress and its interaction with ascorbate and salicylic acid on okra (hibiscus esculents l.) germination and seedling growth. journal of stress physiology & biochemistry, vol. 7 no. 1 2011, pp. 55-65 issn 1997-0838 Barkosky, RR., Einhellig FA (1993). Effects of salicylic acid on plant–water relationships. J Chem Ecol 19:237–247. Bartosz G. 1997. Oxidative stress in plants. Acta Physiol. Plant., 19(1): 47-64. Bartosz G. 1997. Oxidative stress in plants. Acta Physiol. Plant., 19(1): 47-64. Ben Hamed K., Castagna A., Salem E., Ranieri A. and Abdelly C. 2007. Sea fennel (Cirthmum Maritimum L.) under salinity conditions: a comparison of leaf and root antioxidant responses. Plant Growth Regul., 53: 185-194. Berenguer, M. and J. Faci (2001). "Sorghum (Sorghum bicolor L. Moench) yield compensation processes under different plant densities and variable water supply." journal of European agronomy 15(1): 43-55 Berenguer, M. and J. Faci (2001). "Sorghum (Sorghum bicolor L. Moench) yield compensation processes under different plant densities and variable water supply." journal of European agronomy 15(1): 43-55. Blum, A 1973. Components analysis of yield responses to drought of sorghum hybrid, EXP. Agric, 9:159-167 Borsani O., Valpuest V. and Botella M. A. (2001) Evidence for a role of salicylic acid in the oxidative damage generated by Nacl and Osmotic Stress in Arabidopsis seedlings. Plant Physiol., 126: 1024-1030 Borsani, O., Valpuesta, V.and Botella, M.A. (2001). Evidence for a role of salicylic acid in the oxidative damage generated by NaCl and osmotic stress in Arabidopsis seedlings. Plant Physiol. 126:1024–1030. Boyer, J. S. 1970. Leaf enlargement and metapolic rates in corn, soybeans, and sunflower at various leaf water potentials. Plant Physiol. 46: 233-235 Butler, G. L. 1990. Tannins and other phenols: Effects on sorghum production and utilization. Pages 140-144. INTSORMIL Annual Report, 1990. A technical research report of the grain sorghum / pearl millet collaborative research support program (CRSP). Çakir, R. (2004). "Effect of water stress at different development stages on vegetative and reproductive growth of corn." Journal ot Field Crops Research 89(1): 1-16. carbohydrate metabolism in salt-stressed maize plants. Int. J. Agri. Biol., 6: 5–8. Castrillo, M. & Trujillo, I. (1994). Ribulose-1-5, biphosphate carboxylase activity & chlorophyll & protein content in two cultivars of French bean plants under water stress & rewatering. Photosynthetic, 30, 175-181 Castrillo, M. & Trujillo, I. (1994). Ribulose-1-5, biphosphate carboxylase activity & chlorophyll & protein content in two cultivars of French bean plants under water stress & rewatering. Photosynthetic, 30, 175-18 Chapmane, P. a. M. E. W. (1999.). "Water deficit receptivity of maiz silk." journal of Crop Scince. 33(2): 279-282 Chen, C., Dickman, M.B., 2005. Proline suppresses apoptosis in the fungal pathogen of Colletotrichum trifolii. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A 102, 3459–3464. Chen, C., Dickman, M.B., 2005. Proline suppresses apoptosis in the fungal pathogen of Colletotrichum trifolii. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A 102, 3459–3464. Cho, K.,H. Tder, J. Iee and R. Auge. 2006. Mycorrhizal symbiosis and ewsponse of sorghum to combined drought and salinity stress. J. of plant phisio. 163: 517-528 Clough, A. & Hunter, M. N. (2003). Stem diameter: A rapid accurate parameter for monitoring growth of sorghum. In: Proceedings of the 11th Australian Agronomy Conference. Geelong. Retrieved June 22, 2005, from http:/www.regional. org. au /au /asa/2003/p/4/clough.htm Cosculleo, F. a. J. M. F. (1992). "Determination of the Maize ( Zea Maize L.) yield funcationsip respect to water using a line source sprinkle." journal of Field Crop Science 93: 5611-5620. Dahlberg, J. A., and Spinks, M. S. 1995. Current status of the US Sorghum Germplasm Collection. International Sorghum and Millet Newsletter 36: 4-12 Dat, J.F., Lopez-Delgado, H., Foyer, C.H and Scott, I.M (1998). Parallel changes in H2O2 and catalase during thermotolerance induced by salicylic acid or heat acclimation in mustard seedlings. Plant Physiol. 116:1351-1357. Debaeke, P. and A. Aboudrare. 2004. Adaptation of crop management to water-limited environments. Eur. J. Agron. 21: 433-446. defense responses: Physiological Plasticity in higher plants under abiotic constrains. Acta Physiol. Plant, 31: 427-436. Delany T.P., Uknes S., Vernooij B., Friedrich L., Weymann K., Negrotto D., Gaffney T., Gut-Rella M., Kessmann H., Ward E., and Ryals J. 1994. A central role of salicylic acid in plant disease resistance. Science, 266: 1247-125. Du Y.C., Nose A., Wasano K., and Ushida Y. 1998. Responses to water stress of enzyme activities and metabolite levels in relation to sucrose and starch synthesis, the Calvin cycle and the C4 pathway in sugarcane (Saccharum sp). Australian Journal of Plant Physiology, 25:253 – 260. Earl, H.J. and Davis, R.F., 2003. Effect of drought stress on leaf and whole canopy radiation use efficiency and yield of maize. Agronomy Journal. 95: 688- 696 Efeoğlu, B., Ekmekçi, Y., Çiçek N.,2009. Physiological responses of three maize cultivars to drought stress and recovery South African Journal of Botany. 75, 34–42 Ejeta, G. and J. Axtell. 1990. Development of hard endosperm high lysine sorghums. In: Proceedings of an International Conference on Sorghum Nutritional Quality. Ejeta, G. Mertz, E.T., Rooney, L.W. Eraslan F., Inal A., Gunes A., and Alpaslan M. 2007. Impact of exogenous salicylic acid on growth, antioxidant activity and physiology of carrot plants subjected to combined salinity and boron toxicity. Scientia Horticulturae,113: 120–128 Eraslan F., Inal A., Gunes A., and Alpaslan M. 2007. Impact of exogenous salicylic acid on growth, antioxidant activity and physiology of carrot plants subjected to combined salinity and boron toxicity. Scientia Horticulturae,113: 120–128 FAO. 1994. The world sorghum and millet economies: facts, trends and outlook. Faridoddin Q., Hayat S. and Ahmad A. 2003. Salicylic acide influences netphotosynthetic rate, carboxilation efficiency, nitrate reductase activity and seed yield in Brassica juncea. Photosynthetica, 41: 281-284. Farooq, M., Wahid, A., Kobayashi, N., Fujita, D., Basra, S.M.A., 2009. Plant drought stress: effects, mechanisms and management. Agron. Sustain. Dev. 29, 185–212 Foyer, C.H., M. Lelandais. and K.J. Kunert. 1994. Photooxidative stress in plants. Plant Physiol. 92: 696 717. Gamze O., Mehmet D.K., Mehmet A. (2005) Effects of salt and drought stresses on germination and seedling growth of pea (Pisum sativum L.). Turk. J. Agric. 29, 237-242. Garg B.K. (2003) Nutrient uptake and management under drought: nutrient-moisture interaction, Curr. Agric. 27, 1–8 Ghai N., Setia R. C. and Setia N. 2002. Effect of paclobutrazol and salicylic acid on chlorophyll content, hill activity and yield components in Brassica napus L. (cv. GSL-1). Phytomorphol, 52: 309-314. Glass, ADM, Dunlop J. (1974). Influence of phenolic acids on ion uptake. IV Depolarization of membrane potentials. Plant Physiol 54:855– Glass, ADM. (1975). Inhibition of phosphate uptake in barley roots by hydroxy-benzoic acids. Phytochem. 14:2127–2130. Good, A. G., and T. Z. Steven. 1994. The effects of drought stress on free amino asid accumulation and protein suntesis in Brassica napus. Plant Physiol. 909-914. Gubis, J., Vankova, R., Cervena, V., Dragunova, M., Hudcovicova, M., Lichtnerova, H., Dokupil, T. and Jurekova, Z., 2007. Transformed tobacco plants with increased tolerance to drought. South African Journal of Botany. 73. 505- 511 Gui- Rui, Y., Q. F. Wang. And J.Zhuang Modeling . (2004). "the water use efficiency of soybean and maize plants under environmental stress. Application of synthetic nedel of photosynthesis- transpiration based on stomatal behavior." journal of plant physiology 161(1): 303-318. Hajhassani Asl, A., A. moradi Agham, H. Ali ababi frahan and M. Rassei Far. (2011). "Three forage yield dnd its components under water condation on dealay in Khoy Zone (Iran )." journal of Environmental Biology 5(5): 847- 852. Hamad A., Hamada A. (2001) Grain soaking presowing in ascorbic acid or thiamin versus the adverse effects of combined salinity anddrought on wheat seedlings. in Proceedings of the 12th International Congress on Photosynthesis (Melbourne, Australia, Brisbane, Australia, August 18-23, August 18-23, 2001), CSIRO Publishing, S15-005 Harper J. P. and Balk N. E. 1981. Characterization of the inhibition of K+ absorption in oat root by salicylic acid. Plant Physiol., 68: 1349-1353. Hayat Q., Hayata S.H., Irfan M., and Ahmad A. 2010. Effect of exogenous salicylic acid under changing environment A review. Environmental and Experimental Botany, 68:14–25 Hayat S. and Ahmad A. 2007. Salicylic acid: a plant hormone. Speringer. House, L.R. 1985. A guide to sorghum breeding. 2nd ed.: ICRISAT, India Howell, T. 2001. Enhancing water use efficiency in irrigated agriculture. Agron. J. 93:281-189. Hua, B., Guo, W.Y., 2002. Effect of exogenous proline on SOD and POD activity of soybean callus under salt stress. Acta Agric. Boreali-Sinica 17, 37–40. Hussain M., Malik M.A., Farooq M., Ashraf M.Y., Cheema M.A. (2008) Improving Drought tolerance by exogenous application of glycinebetaine and salicylic acid in sunflower, J. Agron. Crop Sci. 194, 193–199. Hussein M.M., Balbaa L.K., and Gaballah M.S. 2007. Salicylic acid and salinity effects on growth of maize plants. Research Journal of Agriculture and Biological Sciences, 3: 321-328. Iqbal, N., Ashraf, M. and Ashraf, M.Y. (2008) Glycinebetaine, an osmolyte of interest to improve water stress tolerance in sunflower (Helianthus annuus L.): water relations and yield. South African J. Bot., 74: 274-281 Jaleel, C. A., P. Manivannan,A. Wahid, M. Farrooq and H.Dmjm. (2009). "Drought stress in plants: a review on morphological characteristics and pigments composition." Journal of Agricaltural and Biology 11: 100-105. Janda, T., Szalai, G. Tari, I and Paldi, E. (1999). Hydroponic treatment with salicylic acid decreases the effects of chilling injury in maize (Zea mays L.) plants. Planta 208:175-180. Jekendra, Y. (1999). " Physica and morphologyical properties of forage crop with refrence to cutting Archivesde." Journal of Polymer Since and Technology 59: 37- 49. Jiand, Y. a. B., hung (2001). "Drought and heat strress injury to two cool season turf grasses in relaition to ontioxidant metabolism lipid proxidation." Journal of Crop Science 44(1): 436-442. Jithesh M. N., Prashanth S. R., Sivaprakash K. R. and Parida A. K. 2006. Antioxidative response mechanisms in halophytes: their role in stress defense. J. Genetics, 85 (3): 237-254. Jolivet, Y., F. Lahrer, J. Hamelin. 1982. Osmoregulation in higher plants: the protective effect of glycinebetaine against the heat destabilization of membranes. Plant Science Letters, 25: 193-201. Juan M., Rivero R. M., Romero L. and Ruiz J. M. 2005. Evaluation of some nutritional and biochemical indicators in selecting salt-resistant tomato cultivars. Environ. Exp. Bot., 54: 193-201. Kang, S., W. Zhang (2000). "An improved water-use efficiency for maize grown under regulated deficit irrigation." journal of Field Crops Research 67(3): 207-214 Kang, Sh., Shi, W. & Zhang, J. (2000). An improved water-use efficiency for maize grown under regulated deficit irrigation. Field Crops Research, 67, 207-214. Karyudi, and R. J. Fletcher. 2003. Osmoregulation in birdseed millet under conditions of water stress II. Variation in F3 lines of Setaria italic and its relationship to plant morphology and yield. Euphytica 132: 191-197. Kaya, M.D., Okçub, G., Ataka, M., Çıkılıc, Y., Kolsarıcıa, Ö., (2006) Seed treatments to overcome salt and drought stress during germination in sunflower (Helianthus annuus L.), Eur. J. Agron. 24, 291–295. Khan W., Prithviraj B. and Smith D. l. 2003. Photosynthetic response of com and soybean to foliar application of salicylates. J. Plant Physiol., 160: 485-492. Khan, A., and M. Ashraf. 1993. Water relations and drought tolerance in two wheat varieties undea water stress. Pakis. J. Sci. Indust. Res. 36: 151-155. khanova, E. A., Fedina A. B., Kulaeva O. N., (1999). Effect of salicylic acid and (2´-5´)- oligoadenylates on protein synthesis in tobacco leaves under heat shock conditions: comparative study. Russ. J. of Plant Physiol., 46, 16–22. Khodary S. E. A. 2004. Effect of salicylic acid on the growth, photosynthesis and Kholova, J., C.T. M. Hasan, M.Khocova and V. Vadie. (2011). "Doesa terminal drought tolerance Q TL contribute to differences in ros scavenging enzymes and photosynthetic pigments in pear millet exposed to drought ? ." journal of Environmental and Experimental Botany. 71 (2): 99-106. Koyro H. W. 2006. Effect of salinity on growth, photosynthesis, water relatinns and solute composition of potential cash crop halophyte Plantago coronopus (L.). Environ. Exp. Bot., 56:136-149. Kuzniak E. 2004. Ascorbate and ascorbate-dependent enzmes in derached tomato leaves under coditions modulating the ascorbate pool. Acta Physiol. Plant, 26(3): 1-6. Lafitte, R., 2002. Relationship between leaf relative water content during reproductive stage water deficit and grain formation in rice. Field Crops Reaseachers. 76: 165-174. Lal, L. 2000. Phosphatic Biofertilizer. Agrotech Publishing Academy P. 224 Lawlor, D.W. 2002. Limitation to photosynthesis in Water-stressed leaves: Stomata vs. metabolism and the role of ATP. Annals of Botany. 89: 871-885 Lawlor, D.W., and Cornic, G., 2002. Photosynthetic carbon assimilation and associated metabolism in relation to water deficits in higher plants. Plant, Cell and Environment. 25: 275-294. Lerma, C., P.J. Rich, G.C. Ju, W. Yang, A.D. Hanson and D. Rhodes, 1991. Betaine deficiency in maize. Complementation tests and metabolic basis. Plant Physiology, 95: 1113–1119. Loggini B., Scartazza A., Brugonli E. and Navari-Izzo F. 1999. Antioxidative defense system, pigment composition, and photosynthetic efficiency in two wheat cultivars subjected to drought. Plant Physiol., 119: 1091-1099. Lopez, C.M.L., H., Takahashi, and S., Yamazaki. 2002. Plant-water relations of kidney bean plants treated with NaCl and foliarly applied glycinebetaine. Journal of Agronomy Crop Science. 188: 73–80. Maclagan, J. L. 1993. Effect of water stress on the water relation in brassica species, Can. J. of Plant Sci. 73: 225-529. Mafakheri, A., Siosemardeh,A., Bahramnejad, B., Struik, P.C., Sohrabi E., 2010. Effect of drought stress on yield, proline and chlorophyll contents in three chickpea cultivars. AJCS .4(8), 580-585 Makela, P., K. Jokinen, M. Kontturi, P. Peltonen-Sainio, E. Pehu and S. Somersalo. 1998. Foliar application of glycine betaine – a novel product from sugarbeet – as an approach to increase tomato yield. Industrial Crops and Prodcts, 7: 139–148. Malekian, R., J. Abedi-Koupai,and S. Eslamian. (2011). "Influences of clinoptilolite and surfactant-modified clinoptilolite zeolite on nitrate leaching and plant growth." Journal of Hazardous Materials 185(2): 970-976. Martin, Y. H., Leonard, W. H. and D. L. Stamp. 1986. Principles of field crop production. Macmillam publishing Co. Inc Martınez, J.P., Silva, H., Ledent, J.F. and Pinto. M., 2007. Effect of drought stress on the osmotic adjustment, cell wall elasticity and cell volume of six cultivars of common beans (Phaseolus vulgaris L.). Europ Journal Agronomy. 26: 30- 38 Masood A., Shab N. A., Zeeshan M. and Abraham G. 2006. Differential response of antioxidant enzymes to salinity stress in two varieties of Azolla (Azolla pinnata and Azolla filiculcides). Environ. Exp. Bot., 58: 216-222 Matysik J., Alia A., Bhalu B. and Mohanty p. 2002. Molecular mechaanisms of quenching of reactive oxygen species by proline under stress in plants. Current Sci., 82(5): 525-532. McBee, G.G.M. 1982. Carbohydrates in Sorghum Culms as Influenced by Cultivars, Spacing, and Maturity over a Diurnal Period. Crop Science 22:381-385. Meek, C., Oosterhuis, D. and Gorham, J. (2003): Does foliar-applied glycine betaine affect endogenous betaine levels and yield in cotton? Online. Crop Management doi 10.1094/CM- Mohanty, A., H. Kathuria, A. Ferjani, A. Sakamoto, P. Mohanty, N. Murata and A.K. Tyagi. 2002. Transgenics of an elite indica rice variety Pusa Basmati1 harbouring the codA gene are highly tolerant to salt stress. Theorretical and Applied Genetics, 106: 51–57. Mohsenzadeh, S., A. M. Malboobi, K. Razavi. and S. Farrahi- Aschtiani. (2006.). "Physiological and Molecular responses of Aluropus lagopoides (poaceae) to water deficite." journal of Environmental and Experimental Botany. 56(1): 314-322. Murillo A., Lopez B.R., Aguilar C., Kaya T., Larrinaga A., Flores H. (2002) Comparative effects of NaCl and Polyetylene glycol on germination, emergence and seedling growth Mنkelن, P., Jokinen, K., Kontturi, M., Peltonen-Sainio, P., Pehu, E., Somersalo, S., 1998a. Foliar application of glycine betaine – a novel product from sugar beet – as an approach to increase tomato yield. Ind. Crops P rod. 7, 139–148 Naidu, B.P., P.R., Morris, and D.F., Cameron.1996. Treatment with glycinebetaine to increase seed germination, seedling vigour and yield of cotton. Proceedings of 8th Australian Conference, Gold Coast. Nemeth M., Janda T., Horvath E., Paldi E. and Szalai G. 2002. Exogenous salicylic acid increase polyamine content but may decreases drought tolerance in maize. Plant Sci., 162: 569-574. Nesmith, D. S. and . J. Rithe. 2002.). "Shorth and long term responses of corn to a pre- anthesis soil water deficite. ." journal of Agronomy and Crop Science 84(1): 107-113. . Noctor, G. and CH. Foyer. 1998. Ascorbate and glutathione: Keeping active oxygen under control. Annu. Rev of Plant Physiol and Plant Mol. Biol. 49: 249-279 Nomura, M., T., Hibino, T., Takabe, T., Sugiyama, A., Yokota, H., Miyake, and T., Takabe. 1998. Transgenically produced glycinebetaine protects ribulose 1, 5-bisphosphate carboxylase/oxygenase from inactivation in Synechococcus sp. PCC 7942 under salt stress. Plant Cell Physiology. 39: 425-432 Ober, E.S., Bloa, M.L., Clark, C.J.A., Royal, A., Jaggard, K.W. and Pidgeon, J.D., 2005. Evaluation of physiological traits as indirect selection criteria for drought tolerance in sugar beet. Elsevier Science. 10: 231- 249. of cowpea. J Agron Crop Sci. 188, 235-247 oncel, I., Y. Kelesand A, S. Ustuh (2000). "Interactive of temperatur and heavy metal stress on the growth and some biological compounds in wheat seadling." Journal of Environmental Pollution 107(2): 315-320. Oneill, P.M., Shanahan, J.F. and Schepers, J.S., 2006. Use of chlorophyll fluorescence assessments to differentiate corn hybrid response to variable water conditions. Crop Science, vol. 46. Osborne, S., J. S. Schepers, et al. (2002). "Detection of phosphorus and nitrogen deficiencies in corn using spectral radiance measurements." Journal of Amrican Journal Agricaltural and Biology Science 2(1): 115-121. Paleg, L.G., G.R., Stewart, and R., Starr, 1985. The effect of compatible solutes on proteins. Plant and Soil 89: 83- 94. Pancheva T. V., Popva L. P. and Uzonova A. M. 1996. Effect of salicylic acid on growth and photosynthesis in barley plants. J. Plant Physiol., 149: 57-63. Panda, R., S. Behera, and P.S. Kashyap. (2004). "Effective management of irrigation water for maize under stressed conditions." Journal of Agricultural water management 66(3): 181-203. Parida A. K. and Das A. B. 2005. Salt Tolerance and salinity effects on plants: review. Ecotox. Environ. Safe., 60: 324-349. Parrish, D.J., Ervin, E.H. nad Seiler, J.R., 2006. Studies with triazoles to alleviate drought stress in greenhouse- grown maize (Zea mays L.) seedlings. 123 page Parry, M.A.J., Andraloje, P.J., Khan, S., Lea, P.J. and Keys, A.J., 2002. Rubisco activity: Effects of drought stress. Annals of Botany. 89: 833- 839. Passiora, j. B. 1972. The effect of root geometry an the yield of wheat growing on stored water. Aust. J. Agric. Res. 23: 745: 752 Passioura J.B. (2007). The drought environment: physical, biological and agricultural perspectives. J. Exp. Bot. 58(2), 113-117 Pereira, L.S., Oweis, T., Zairi, A. 2002. Irrigation management under water scarcity. Agr. Water Manage. 57: 175-206. Pignocchi, C. and CH. Foyer. 2003. Apoplastic ascorbate metabolism and its role in the regulation of cell signaling. Current Opinion in Plant Biol. 6: 379–389 Ping, B., Fang- Gong, S., Ti- Da G., Zhao- Hui, S., Yin- Yan, L. and Guang- Sheng Z., 2006. Effect of soil drought stress on leaf water status, membrane permeability and enzymatic antioxidant system of maize. Pedosphere. 16(3): 326- 332 Plaut, Z., 2003. Plant exposure to water stress during specific growth stages, Encyclopedia of Water Science, Taylor & Francis, pp. 673– 675 Popova L., Ananieva V., Hristova V., Christov K., Geovgieva K., Alexieva V. and Stoinova Z. 2003. Salicylic acid and methyl Jasmonate-induced protection on photosynthesis to paraquat oxidative stress. Bulg. J. Plant Physiol., Special Issus: 133-152. Rajasekaran, LR, Blake TJ (1999). New plant growth regulators protect photosynthesis and enhance growth under drought of jack pine seedlings. J Plant Growth Regul 18:175–181. Raskin, I, (1992). Role of salicylic acid in plants. Annu. Rev. Plant Physiology Plant Mol. Biol.,43 439–463. Ritchie, S. and T. Henry. 1990. Leaf water content and gas ezchange parameters of two wheat genotypes differing in drought resistance. Crop Sci. 30: 105-111. Sahu G. k., Kar M. and Sabay S. C. 2002. Electron transport activities of isolated thylakoids form wheat plants grown in salicylic acid. Plant Biol., 4: 321-328. Sairam R. K. and Tyagi A. 2004. Physiology and molecular biology of salinity stress tolerance in plants. Currents Sci., 86(3): 407-421. Saleem, A., U. Saleem, and G. M. Sublani. (2007). "Correlation and path coefficient analysis in maize (Zea mays L.)." Journal of Agricultural Research 45:110-114. Santiago, L. S., T.S. Lau, P.J. Melcher, O. Coin. and G. Godeein. (2000). "Morphological and physiological responses of Hawalian Hibis Cas tilaceus population to light , salinity and drought ." journal of Plant Soil. 161(1): 99-106. Schlemmer, M.R, Francis, D.D., Shanahan, J.F., and Schepers, J.S., 2005. Remotely measuring chlorophyll content in corn leaves with differing nitrogen levels and relative water content. Agronomy Journal, vol. 97. Schonfeld, M. A., R. C. Johnson, B. F. Carver, and D. W. Mornhinweg. 1988. Water relation in winter wheat as drought resistance indicators. Crop Sci. 28: 526-531. Shah F.S., Watson C.E., Cabera E.R. (2002). Seed vigor testing of subtropical Corn hybrids . Research Rep. 23(2), 56-68 Shakirova F. M., Sakhabutdinova A. R., Bozrutkova M. V., Fatkhutdinova R. A. and Fatkhutdinova D. R. 2003. Changes in the hormonal status of wheat seedlings induced by salicylic acid and salinity. Plant Sci., 164: 317-322. Shalata, A. and P. M. Neumann. 2001. Exogenous ascorbic acid (vitamin C) increases resistance to salt stress and reduces lipid peroxidation. J. Experim. Bot. 52: 2207–2211. Shukry, W. M. (2001). "Effect of Soil Type on Growth Vigour, Water Relations, Mineral Uptake and." Pakistan Journal of Biological Sciences 4(12): 1470-1478. Sinaki, J., G. Nourmohamadi. and A. Malki. ( 2004.). "Effect of water defficiti on Seedling, planties and compatible solutes of forage sourghum 4th International Crop Science Congress."100-107. Smirnoff, N. 2000. Ascorbic acid: metabolism and functions of a multi-facetted molecule. Current Opinion Plant Biol. 3: 229–235 Sofo A., Tuzio A. C., Dichio B. and Xiloyannis C. 2005. Influence of water deficit and rewatering on the components of the ascorbate-glutathione cycle in four interspecific peunnus hybrids. Plant Sci., 169: 403-412. Sonon, R. N., Suazo, R., Pfaff, L., Dickerson, J. T. & Bolsen, K. K., 1990. Effects of maturity at harvest and cultivar agronomic performance of forage sorghum and the nutritive value of selected sorghum silages. (Report of Progress 629.) Agricultural Experiment Station Kansas State University, Manhattan, Waltcr. R. Woods. Director Srivastava, M.K., Dwivedi U.N., (2000). Delaye ripening of banana fruit by salicylic acid. Plant Sci, 158, 87–96. Stroinski A. 1999. Some physiological and biochemical aspects of plant resistance to cadmium effect. I. Antioxidative system. Acta Physiol. Plant, 21(2): 157-188. Subbarao, G.V., Nam, N.H., Chauhan, Y.S., Johanse,n C., 2000. Osmotic adjustment, water relations and carbohydrate remobilization in pigeonpea under water deficits, J. Plant Physiol. 157, 651–659 Sudhakar C., Lakshmi A. and Giridarakumar S. 2001. Changes in the antioxidant enzyme efficacy in two high yielding genotypes of mulberry (Morus alba L.) under NaCl salinity. Plant Sci., 141: 613-619. Traore, S. B., C. D. Pilcher, and M. E. Riee. (2000). "Bt and non-Bt maize growth and development as affected by temperature and drought stress." Journal of Agronomy 92(5): 1027-1035. Turhan, H. and I.Baser., 2004. In vitro and in vivo water stress in sunflower (Helianthus annus L.). HELIA. 27:227-236. Turner, N.C., Wright, G.C., Siddique, K.H.M., 2001. Adaptation of grain legumes (pulses) to water-limited environments, Adv. Agron. 71, 123–231 Verslues, P.E., Agarwal, M., Katiyar-Agarwal, S., Zhu, J. and Zhu, J.K., 2006. Methods and concepts in quantifying resistance to drought, salt and freezing, abiotic stresses that affect plant water status. Plant Journal. 45, 523- 539 Vinocur, B. and Altman, A., 2005. Recent advances in engineering plant tolerance to abiotic stress: achievements and limitations., Elsevier Science. 16: 123- 132. WeiBing, X. and C.B. Rajashekar. 2001. Glycine betaine involvement in freezing tolerance and water stress in Arabidopsis thaliana. Environmental and Experimental Botany, 46:21–28. WeiBing, X., and Rajashekar, C.B. 1999. Alleviation of water stress in beans by exogenous glycine betaine. Plant Science. 148:185–192. Wilson, J. R. (1981). Effects of water stress on herbage quality. In: Proceedings of the 15th International Grassland Conference, Lexington, Ky, U. S. A.1981, pp.470-472 Xu, W., Rosenowd, T., and Nguyenh, T., 2007. Stay green trait in grain sorghum: relationship between visual rating and leaf chlorophyll concentration. Plant Breeding. 119: 365–367. Yan, H., gang, L.Z., Zhao, C.Y., Guo, W.Y., 2000. Effects of exogenous proline on the physiology of soybean plantlets regenerated from embryos in vitro and on the Rontein, D., Basset, G., Hanson, A.D., 2002. Metabolic engineering of osmo-protectant accumulation in plants. Metab. Eng. 4, 49–56 Yang, G., X. Chen ,and J. Sanico . (2011). "Comparative genomics of two ecologically differential populations of Hibiscus tiliaceus under salt stress." Journal of Functional Plant Biology 38(3): 199-208. Yang, W.J., P.J. Rich, J.D. Axtell, K.V. Wood, C.C. Bonham, G. Ejeta, M.V. Mickelbart and D. Rhodes. 2003. Genotypic variation for glycine betaine in sorghum. Crop Science, 43:162–169. YaziciI., Turkan F., Sekmen A. H. and Demiral T. 2007. Salinity tolerance of purslane (Portulaca oleracea L.) is achieved by enhanced antioxidative system, lower level of lipid peroxidation and proline accumulation. Environ. Exp. Bot., 61(1): 49-57. 0804-02-RS